MOTILIDADE E MIGRAÇÃO DE NEMATOIDES EM AMBIENTES SALINOS

Autores

  • Ivis Andrei Campos e Silva Department of Agricultural Engineering, Universidade Federal Rural de Pernambuco, Recife, PE https://orcid.org/0000-0002-9555-4238
  • Elvira Maria Regis Pedrosa Department of Agricultural Engineering, Universidade Federal Rural de Pernambuco, Recife, PE https://orcid.org/0000-0002-0755-8352
  • Enio Farias de França e Silva Department of Agricultural Engineering, Universidade Federal Rural de Pernambuco, Recife, PE https://orcid.org/0000-0002-8652-503X
  • Mario Monteiro Rolim Department of Agricultural Engineering, Universidade Federal Rural de Pernambuco, Recife, PE https://orcid.org/0000-0003-2111-3875
  • Thais Fernanda da Silva Vicente Department of Agricultural Engineering, Universidade Federal Rural de Pernambuco, Recife, PE https://orcid.org/0000-0002-9150-9739

DOI:

https://doi.org/10.1590/1983-21252022v35n414rc

Palavras-chave:

Meloidogyne enterolobii. Pratylenchus coffeae. Salinidade. Coluna de solo segmentada.

Resumo

Os nematoides parasitas de plantas causam sérios prejuízos agrícolas no Nordeste brasileiro. Adicionalmente, a salinização do solo, especialmente na região semiárida do Nordeste é outro fator que limita a produtividade das culturas. Avaliou-se nesse estudo, a motilidade de Meloidogyne enterolobii e Pratylenchus coffeae, e, a migração vertical de P. coffeae em um Argissolo Amarelo sob condições salinas. A motilidade foi avaliada pela submissão de juvenis do segundo estádio de M. enterolobii e juvenis e adultos de P. coffeae em soluções salinas de NaCl, CaCl2, MgCl2 nas concentrações de 0,00, 0,25, 0,50, 0,75 e 1,00 M, e em solução mista (combinação entre os três sais na proporção 7:2:1) aos 2, 4, 6 e 8 dias de exposição. A migração de P. coffeae foi estudada em colunas segmentadas de 10 cm de comprimento e 4,40 cm de diâmetro interno, preenchidas com solo salino (mistura de NaCl, CaCl2 e MgCl2) e não salino cujas avaliações foram realizadas aos 2, 4 e 6 dias após a infestação do solo. A motilidade e quantidade de juvenis ativos de ambos nematoides reduziu com o aumento da concentração salina. A partir de 0,50 M não foi observada atividade de M. enterolobii em nenhum dos períodos de exposição a NaCl e CaCl2. O aumento das concentrações de NaCl, CaCl2, MgCl2 reduziu exponencialmente o número de P. coffeae ativos, sessando sua atividade a partir de 0,75 M. A migração vertical de P. coffeae no solo foi negativamente afetada pela salinidade, apresentando distribuição mais uniforme no solo não salino.

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Referências

ALMEIDA, N. O. et al. Occurrence and correlations of nematodes, Fusarium oxysporum and edaphic factors on banana plantations. Journal of Phytopathology, 166: 265-272, 2018.

BAERMANN, G. Eine einfache Methode zur Auffindung von Anklyostomum (Nematoden) Larven in Erdproben. Geneesk Tijdschr Nederlandsch-Indie, 57: 131-137, 1917.

BARROS, B. E. A. et al. Mobility of Pratylenchus coffeae in segmented soil columns submitted to water flows and plant stimuli. Semina: Ciências Agrárias, 40: 2189-2200, 2019.

CARNEIRO, R. M. D. G. et al. Primeiro registro de Meloidogyne mayaguensis em goiabeira no Brasil. Nematologia Brasileira, 25: 223-228, 2001.

CASTAGNONE-SERENO, P. Meloidognye enterolobii (= M. mayaguensis): profile of an emerging, highly pathogenic, root-knot nematode species. Nematology, 14: 133-138, 2012.

CASTILLO, P.; VOVLAS, N. Pratylenchus (Nematoda: Pratylenchidae): Diagnosis, biology, pathogenicity and management. Nematology Monographs and Perspectives, v. 6, p. 528, 2007.

CASTRO, F. C.; ARAÚJO, J. F.; SANTOS, A. M. Susceptibility to soil salinization in the quilombola community of Cupira - Santa Maria da Boa Vista - Pernambuco – Brazil. Catena, 179: 175-183, 2019.

CASTRO, J. M. C.; LIMA, R. D.; CARNEIRO, R. M. D. G. Variabilidade isoenzimática de populações de Meloidogyne spp. provenientes de regiões brasileiras produtoras de soja. Nematologia Brasileira, 27: 1-12, 2003.

CHALANSKA, A.; LABANOWSKI, G.; SAS, D. Root-lesion nematodes (Pratylenchus spp.) in ornamental plant nurseries–influence of soil texture, acidity, salinity and organic matter content. Communications in Biometry and Crop Science, 11: 98-104, 2016.

EDONGALI, E. A.; FERRIS, H. Varietal response of tomato to the interaction of salinity and Meloidogyne incognita infection. Journal of Nematology, 14: 57-62, 1982.

FRANCILINO, A. H. et al. Efeito do fluxo de água, isca vegetal e volume de poros do solo na mobilidade de Pratylenchus coffeae. Nematropica, 47: 63-73, 2017.

FREIRE, M. B. G. S. et al. Salt Affected Soils in the Brazilian Semiarid and hytoremediation as a Reclamation Alternative. In: TALEISNIK, E.; LAVADO, R S. (Orgs.) Saline and Alkaline Soils in Latin America. Springer, 2020, p. 119-139.

HOLANDA, J. S. et al. Qualidade da água para irrigação. In: GHEYI, H. R. et al. (Eds) Manejo da salinide na agricultura: Estudos básicos e aplicados. Fortaleza, CE: Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Salinidade, 2016, s/v, cap 4, p. 35-50.

HUSSEY, R. S.; BARKER, K. R. A comparison of methods of collecting inocula of Meloidogyne spp., including a new technique. Plant Disease Report, 57: 1025-1028, 1973.

IBRAHIM, S. K. et al. Plant-parasitic nematodes on stone fruits and citrus in Lebanon. Lebanese Science Journal, 17: 9-24, 2016.

JAIRAJPURI, M. S.; AZMI, M. I.; BAJAJ, H. K. Studies on nematode behaviour I. Effect of pH and salt concentrations on the survival of Hoplolaimus indicus, Helicotylenchus indicus, Xiphinema basiri and Mylonchulus minor. Indian Journal of Nematology, 4: 171-181, 1974.

JENKINS, W. R. A rapid centrifugal-flotation technique for separating nematodes from soil. Plant Disease Reporter, 48: 692-692, 1964.

JONES, J. T. et al. Top 10 plant-parasitic nematodes in molecular plant pathology. Molecular Plant Pathology, 14: 946-961, 2013.

KHAN, M. W.; KHAN, A. A.; KHAN, M. R. Effect of soil salinity on penetration, development and pathogenicity of Meloidogyne incognita on okra and cucumber. Indian Journal of Nematology, 27: 194-208, 1997.

MACHADO, R. M. A.; SERRALHEIRO, R. P. Soil salinity: Effect on vegetable crop growth: Management practices to prevent and mitigate soil salinization. Horticulturae, 30: 1-13, 2017.

MAGGENTI, A. R.; HARDAN, A. The effects of soil salinity and Meloidogyne javanica on tomato. Journal of Nematology, 5: 231-234, 1973.

MAI, W. F.; MULLIN, P. G. Plant-parasitic nematodes: a pictorial key to genera. Ithaca: Cornell University Press, 1996. 277 p.

MAJD TAHERI, Z. M. et al. Molecular and phylogenetic studies on Pratylenchidae from Iran with additional data on Pratylenchus delattrei, Pratylenchoides alkani and two unknown species of Hirschmanniella and Pratylenchus. Nematology, 15: 633-651, 2013.

MONTEIRO, A. R.; LORDELLO, L. G. E. Encontro do nematoide Pratylenchus coffeae atacando cafeeiro em São Paulo. Revista de Agricultura, 49: 164-164, 1974.

MOURA, R. M. et al. Espécies do fitonematóide do gênero Meloidogyne (Nematoda–Heteroderidae) encontradas associadas à cultura da cana–de–açúcar no estado de Pernambuco. Anais da Academia Pernambucana de Ciência Agronômica, 8: 193-204, 2012.

MOURA, R. M.; MONTEIRO, A. R. Pratylenchus coffeae on yams in Brazil. Fitopatologia Brasileira, 20: 256-256, 1995.

NIELSEN, A. L. et al. Effect of soil salinity on entomopathogenic nematode survival and behaviour. Nematology, 13: 859-867, 2011.

PEDROTTI, A. et al. Causas e consequências do processo de salinização dos solos. Revista Eletrônica em Gestão, Educação e Tecnologia Ambiental, 19: 1308-1324, 2015.

PINKERTON, J. N. et al. Vertical migration of Meloidogyne chitwoodi and M. hapla under controlled temperature. Journal of Nematology, 19: 152-157, 1987.

POSTNIKOVA, O. A. et al. Transcriptome analysis of resistant and susceptible alfalfa cultivars infected with root-knot nematode Meloidogyne incognita. Plos One, 10: 1-17, 2015.

PROT, J. C. Behaviour of juveniles of Meloidogyne javanica in salt gradients. Revue de Nématologie, 1: 135-142, 1978a.

PROT, J. C. Influence of concentration gradients of salts on the movement of second stage juveniles of Meloidogyne javanica. Revue de Nématologie, 1: 21-26, 1978b.

PROT, J. C. Influence of concentration gradients of salts on the behaviour of four plant parasitic nematodes. Revue de Nématologie, 2: 11-16, 1979.

PUDASAINI, M. P.; VIAENE, N.; MOENS, M. The influence of host and temperature on the vertical migration of Pratylenchus penetrans. Nematology, 9: 437-447, 2007.

R CORE TEAM (2018). R: A language and environment for statistical computing. R Foundation for Statistical Computing, Vienna, Austria. URL https://www.R-project.org/.

RAY, S.; DAS, S. N. Nematodes of saline soils in Orissa, India. Indian Journal of Nematology, 10: 231-235, 1980.

RIBEIRO, M. R.; RIBEIRO FILHO, M. R.; JACOMINE, P. K. T. Origem e classificação dos solos afetados por sais. In: GHEYI, H. R et al. (Eds.). Manejo da Salinidade na Agricultura: Estudos Básicos e Aplicados. Fortaleza, CE: Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Salinidade, 2016. s/v, cap. 2, p. 9-16.

SAHAH, M. M.; MAHAMOOD, M. Nematodes-a lesser known group of organisms. In: SHAH, M. M.; MAHAMOOD, M. (Eds.). Nematology-concepts, diagnosis and control. Rijeka, Croácia: Intech, 2017. s/v, cap. 1, p. 3-18.

SILVA, J. L. A. et al. Evolução da salinidade em solos representativos do Agropólo Mossoró-Assu cultivado com meloeiro com água de deferentes salinidades. Agropecuária Científica no Semiárido, 11: 26-31, 2011.

SILVA, M. S. et al. Comportamento de genótipos de RB de cana-de-açúcar ao parasitismo dos nematoides das galhas. Revista Brasileira de Ciências Agrárias, 11: 73-79, 2016.

SILVA, M. C. L.; SANTOS, C. D. G. Distribution of Meloidogyne enterolobii in guava orchards in the state of Ceará, Brazil. Revista Caatinga, 30: 335-342, 2017.

SIKORA, R. A. et al. Reflections and challenges: nematology in subtropical and tropical agriculture. In: SIKORA, R. A. et al. (Eds.) Plant parasitic nematodes in subtropical and tropical agriculture. Wallingford, UK: Cabi, 2018, s/v, cap 1, p. 1-19.

YANG, B; EISENBACK, J. D. Meloidogyne enterolobii n. sp. (Meloidogynidae), a root-knot nematode parasitizing pacara earpot tree in China. Journal of Nematology, 15: 381-391, 1983.

ZIMMERMANN, A. W. P. De nematoden der koffie wortels. Deel I. Mededeel´s Lands Plantentuin, 27: 1-64, 1898.

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Publicado

20-09-2022

Edição

Seção

Agronomia